Protocolo Monitoreo Biolominiscencia.

Guía de Monitoreo de
Higiene por Bioluminiscencia
La generación de esta GUIA corresponde a la necesidad de unificar criterios respecto al monitoreo de la higiene hospitalaria.
INTRODUCCIÓN
¿Qué Significa para Nosotros Higiene y
Limpieza Hospitalaria? ¿Cuál es la Definición de Limpio?
CONCEPTO DE LIMPIEZA:
Procedimiento que elimina por arrastre mecánico la suciedad y materia
orgánica en objetos y superficies inertes o vivas.
A pesar de existir una variedad de métodos utilizados para evaluar la eficacia de la limpieza, aún no existen estándares ni pautas que provean una
definición de lo que constituye una superficie ambiental limpia. Actualmente, se utiliza la inspección visual para verificar la eficacia de protocolos de
limpieza, pero se demostró que este método no es eficaz. Con un cuerpo
de evidencia cada vez más grande que respalda la transmisión ambiental
de infecciones Asociadas a la Atención de la Salud (IAAS), existe un interés
renovado en la limpieza ambiental y su control. Hay un debate en curso
sobre el tema con el acuerdo de que el control de la limpieza debe ser parte
del proceso de limpieza ambiental. En concreto, el CDC dice: “Controlar
el rendimiento de la limpieza para asegurar limpieza y desinfección consistentes de las superficies...” Por lo tanto las superficies aparentemente
limpias a la vista, aún pueden albergar niveles significativamente altos de
contaminación.
De esta forma nace la bioluminiscencia como una forma de medición cuantitativa rápida de los residuos orgánicos sobre una superficie, mediante
la cuantificación de cantidad de ATP (adenosin tri-fosfato) expresada en
URL (unidades relativas de luz) correspondiente a una emisión luminosa
directamente proporcional a la cantidad de ATP presente en la superficie
(Ref 1.1)
La contaminación brinda un medio ideal para la proliferación de microorganismos. Además, ofrece una barrera resistente contra los agentes de
limpieza y sanitarios.
1
El Control de la Higiene con ATP Brinda una Medición de lo siguiente:
Riesgos directos:
Provenientes de altos niveles de microorganismos.
Riesgos indirectos:
Provenientes de residuos orgánicos que pueden albergar, proteger y brindar
una fuente de nutrientes para los microorganismos.
La bioluminiscencia en base a ATP es un método sensible, que permite
medir de forma objetiva la higiene de las superficies y reducir el riesgo de
contaminación cruzada.
OBJETIVOS DE LA GUIA :
Dar a conocer recomendaciones
para evaluar la higiene hospitalaria a través de la medición de
bioluminiscencia.
ÁREAS INVOLUCRADAS EN SU APLICACIÓN:
Unidades Asistenciales Críticas.
Aislamientos.
Endoscopia.
Unificar criterios de coordinación
y metodología en capacitación
y difusión de esta Normas y
Procedimientos.
RESPONSABILIDADES:
Es responsabilidad de los jefes directos
de cada servicio, tales como: Jefaturas
de áreas, Jefaturas de Servicios, Jefes
de Áreas Críticas; Dpto. de Infecciones
y/o en quién se delegue:
Central de Procesamiento o
Servicio de Esterilización.
Promover la difusión de la Guía y
su procedimiento.
Comité de IAAS.
Mantener los registros.
Cuando se implementa un Programa de Control de Limpieza con ATP, una
de las primeras preguntas que se formulan es:
EVIDENCIA CIENTIFICA
“¿Cuál es el valor de URL recomendado
de aceptación/rechazo?”, “¿Cuál es la
definición de limpio?”.
A pesar de no haber una recomendación de niveles estándares de URL de
aceptación/rechazo, cuando se utiliza ATP como herramienta de control, los
valores de estudios comparativos publicados en la literatura revisada por
expertos pueden definir un punto inicial contra el que uno puede medir el
rendimiento de la limpieza.
Se propusieron dos valores de URL de aceptación/rechazo en la literatura más reciente proveniente de estudios clínicos que utilizaron el Sistema
Clean-Trace™ de 3M.
Griffith et ál., propusieron inicialmente 500 URL como el valor de aceptación/rechazo en un estudio publicado en el Journal of Hospital Infections
que utilizó el Sistema Clean-Trace.
En ese estudio, el valor de 500 URL se obtuvo al evaluar las superficies
luego de limpiar y desinfectar siguiendo las mejores prácticas en 29 salas.
Observaron un valor de la media de ATP de 266 URL, con recuentos de
bacterias aerobias, estafilococos y enterobacterias, de menos de 2,5 ufc/
cm2 (determinado en cultivos).
2
Además, en este estudio, Griffith también observó que:
También se sugiere que el valor de aceptación de 250 URL se utilice
como la meta para guiar la mejora continua y el desarrollo de las mejores
prácticas de limpieza.
• Más del 70% de instalaciones evaluadas no estaban en condiciones
aceptables luego de la limpieza, y la evaluación visual era un indicador
poco confiable de la eficacia de la limpieza, ya que tan sólo el 18% se
consideró aceptable.
Es importante entender que, debido a que hay muchas variaciones en las
superficies de hospitales y las prácticas de limpieza, los valores de aceptación/rechazo publicados por estudios comparativos pueden no constituir
una meta alcanzable en vista de todas las circunstancias. Dado que cada
situación es diferente, los niveles de aceptación/rechazo de URL se definen
mejor sobre la base de cada caso. Aplicar un conjunto de valores de aceptación/rechazo de URL para todos los usuarios finales no se recomienda, ya
que un valor de URL adecuado de “aceptación” depende de un número de
factores, tales como:
• Las instalaciones con mayor probabilidad de rechazo en la sala fueron
baños y cocinas, áreas que están frecuentemente implicadas en la propagación de enfermedades intestinales infecciosas.
• Las instalaciones del quirófano contaban con resultados de ATP más bajos, pero el 61% de instalaciones no se consideraba en condiciones aceptables.
En un estudio de seguimiento, Lewis et ál. propusieron un valor de aceptación/ rechazo más estricto de 250 URL sobre la base de resultados al
evaluar la eficacia de la limpieza en un hospital universitario de 1.300 camas, luego de implementación de protocolos de limpieza rutinarios y modificados. Notaron que las prácticas de limpieza mejoradas podían lograr
en forma rutinaria un valor de aceptación/rechazo menor. Lo que es más
importante, también hicieron hincapié en el valor crucial de contrastar estudios comparativos con valores de aceptación/rechazo (ya sean 500 ó 250
URL) para lograr mejoras crecientes en la calidad.
•El método de limpieza utilizado para limpiar superficies.
•La antigüedad y las condiciones de la superficie que se evalúa. Por ejemplo, una superficie lisa y nueva dará como resultado un valor de URL más
bajo que una superficie más antigua, rayada y marcada.
•La naturaleza de la superficie que se evalúa. Por ejemplo, superficies de
acero inoxidable son más sencillas de limpiar en comparación con las de
plástico y, por consiguiente, deben dar como resultado valores menores de
URL luego de la limpieza.
En 2009, Boyce et ál., llevaron a cabo un estudio que consistió en dos
etapas. En la etapa I, se evaluaron métodos de limpieza habituales de la instalación. En la etapa II, se volvió a realizar una evaluación de la instalación
luego de sesiones educativas para el personal de servicios de limpieza. Boyce utilizó el valor de aceptación/rechazo de 250 URL sugerido por Griffith
en un estudio del 2007 y citó esta referencia en su trabajo de investigación
como un estándar recientemente propuesto. Boyce et ál. observaron que
en la etapa II (luego de sesiones educativas) del estudio, 77% (388/503) de
las superficies evaluadas obtuvieron valores inferiores a 250 URL.
Las mejoras en la eficacia de la limpieza mediante
el uso del Sistema Clean-Trace™ de 3M son un
proceso iterativo, donde los valores de estudios comparativos de aceptación/rechazo en URL se reducen a
medida que las prácticas de limpieza mejoran.
Otro estudio importante es el informe del Servicio Nacional de Salud (NHS,
National Health Service - Reino Unido) publicado en julio de 2009. Este
informe brinda evidencia clínica de que, al utilizar el Sistema Clean-Trace,
siete hospitales experimentaron una disminución general del nivel de contaminación, de un promedio de 568 URL a 194 URL, durante un período de
evaluación de seis meses.
El Luminómetro Clean-Trace™ de 3M junto con el
Software en Línea Clean-Trace™ de 3M les permiten
a usuarios establecer valores de aceptación y rechazo
sobre la base de sus datos acumulados.
Sobre la base de la revisión de la literatura publicada actual y la experiencia
clínica de 3M sobre la utilización del Sistema Clean-Trace en un ambiente
de cuidados de la salud, se recomienda adoptar valores iniciales de estudios comparativos:
Estos valores se definen luego de la implementación del
sistema y se utilizan para controlar el desempeño diario
de la limpieza, evaluar nuevos protocolos de limpieza,
guiar esfuerzos de mejora continua y también brindar
retroalimentación sobre la eficacia de la capacitación.
Aceptado < 500 URL
Precaución 501–999 URL
Rechazado > 1000 URL
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Adenosín Trifosfato (ATP)
CONCEPTO BIOLUMINISCENCIA
El ATP está presente en todas las células vivas y es la molécula que brinda
energía para el metabolismo celular. Por consecuencia, está presente en
todos los residuos orgánicos, por ejemplo, fluidos corporales, células de
la piel, microorganismos, etc. Por lo tanto, el ATP constituye un excelente
marcador o indicador de contaminación orgánica o de fuentes biológicas.
El Principio de la Reacción de Bioluminiscencia
El Sistema Clean-Trace™ de 3M está basado en las mediciones de los
niveles de ATP en la superficie. Se utiliza un hisopo Clean-Trace™ de 3M,
que está pre-humedecido con una sustancia catiónica para facilitar la obtención de residuos de suciedad y de ATP procedente de células intactas.
Una vez tomada la muestra, se activa la prueba, y el hisopo con el ATP recogido se pone en contacto con la enzima (luciferina-luciferasa). La enzima
reacciona con cualquier residuo de ATP que quede sobre la cabeza del hisopo, emitiendo luz. La intensidad de la luz es proporcional a la cantidad de
ATP, y, por tanto, al grado de contaminación existente. La medición de la luz
requiere el uso de un Luminómetro Clean-Trace™ de 3M, y los resultados
aparecen en Unidades Relativas de Luz (URL).
La prueba se puede realizar en menos de 30 segundos, entregando un resultado en tiempo real. Esto permite definir una acción correctiva inmediata,
como puede ser volver a limpiar y luego volver a evaluar la superficie.
VENTAJAS EN EL USO DE LA BIOLUMINISCENCIA:
Entrega una oportunidad para monitorear y mejorar los
procesos del control de higiene en el sector Hospitalario.
Permite demostrar el cumplimiento con las normas de
higiene.
Aumenta la probabilidad de lograr las metas de Control
de Infecciones.
Mejora la confianza del paciente respecto a la higiene
existente en todos los equipos y materiales que entran
en contacto con él (equipos médicos, cama, etc.).
APLICACIONES EN LAS QUE SE RECOMIENDA EL USO DE
LA BIOLUMISCENCIA:
Manejo Rutinario de la Higiene.
Monitoreo de equipos.
Brotes.
Confirmación de una descontaminación efectiva.
Entrenamientos de Higiene de Manos.
(Mediciones antes y después del Lavado de Manos.)
4
PROCEDIMIENTOS
PROCEDIMIENTO 1
Toma de la muestra en una superficie
Hisopado: Procedimiento de la toma de muestra.
1.
Tomando la tórula por la parte plástica superior y sin tocar la
parte blanca, hisopar horizontalmente de un lado hacia el otro.
2.
Continuar el hisopado por toda la superficie (ver recuadro)
3.
Repetir el procedimiento verticalmente
4.
Continuar el hisopado por toda la superficie (ver recuadro)
Nota: Se recomienda que el área de la muestra sea 10 x10 cm2.
5.
Una vez terminado de hisopar regrese la tórula al tubo. (ver
imágenes).
6.
Activar la prueba 3M Clean-Trace Surface ATP presionando la
tapa azul dentro del tubo hasta el fondo (suena “click”).
7.
Después de activar la tórula, agitar rápidamente por un mínimo
de 5 segundos para permitir que se mezclen los componentes.
(Agitar de forma horizontal, nunca vertical).
8.
Introducir inmediatamente después la tórula dentro del Luminómetro, cerrar la tapa y seleccionar “Medición de la muestra”. (ver imagen).
9.
El resultado de la medición, expresada en URL (Unidades Relativas de Luz) aparecerá en el lector.
10. Registrar la medición.
5
PROCEDIMIENTO 2
Toma de la muestra en ENDOSCOPIOS
Materiales necesarios para tomar muestras de endoscopio:
1 Contenedor de orina de 50 mL estéril (Con sostenedor).
1 Jeringa de 60 mL estéril.
Conector.
Goma de Silicona (en caso que sea necesario).
60 cc de agua estéril.
Tórula de Superficie (tapa azul).
Tórula de Agua (tapa roja).
Luminómetro.
Procedimiento con tórula de agua (roja)
1.
Poner el Endoscopio lavado sobre una superficie limpia
2.
Con las manos limpias cargar la jeringa con 40 cc de agua estéril.
3.
Introducir la punta del endoscopio en el frasco recolector estéril
del agua, fijándolo para que no se de vuelta.
4.
Introducir 40 cc de agua por el canal del endoscopio presionando
el botón de entrada.
5.
Recoger el agua en el frasco estéril. Introducir 40 cc de aire para
arrastrar todo el líquido.
6.
Dejar el endoscopio y tomar una tórula roja para luego introducirla en el agua estéril.
7.
Regresar la tórula al tubo, activarla y agitar durante mínimo 5
segundos de forma horizontal.
8.
Realizar la medición en el luminómetro. (ver pasos 8 a 10 de
procedimiento 1).
9.
Registrar la medición
Procedimiento con tórula de superficie (azul)
Tomar una muestra del endoscopio por la superficie externa de
éste con el mismo procedimiento para superficies (ver Procedimiento 1).
6
PRECAUCIONES
PRECAUCIONES:
Una muestra, una vez tomada, se puede medir en el luminómetro hasta 4 horas después, siempre y
cuando no haya sido activada.
Nunca activar la tórula, (presionar el botón azul o rojo) hasta que usted no esté listo para la medición.
La medición debe ser tomada hasta máximo 30 segundos de activada la tórula.
PRECAUCIONES DE TESTEO:
SUPERFICIES MUY SUCIAS.
Altos niveles de polvo pueden distorsionar la señal.
Optimice las tórulas para bajos niveles de contaminación
Use sobre superficies pre lavadas.
No tome muestras sobre superficies con desinfectantes recién aplicados
No tome muestras en manos desinfectadas con alcohol (o alcohol gel).
PRECAUCIONES DE PRUEBA:
LUZ SOLAR
Las mediciones NO deben realizarse bajo la luz solar directa, ya que la fosforescencia puede incrementar la lectura URL.
Las muestras pueden ser recolectadas al aire libre y luego llevadas al interior para ser medidas,
tiempo suficiente para que la fosforescencia sea sobreseída.
PRECAUCIONES ADICIONALES:
TEMPERATURA, ALMACENAMIENTO.
Vida útil: Asegure que Clean-Trace™ ATP Tests no estén vencidas (ver fecha de expiración).
Almacenamiento: Almacenar las tórulas en su empaque original a temperaturas de refrigeración
entre 2-8º C.
Si las tórulas están sin refrigeración a temperaturas bajo 21º C, ellas deberían ser usadas lo antes
posible. En el caso que el tiempo de almacenamiento a temperaturas sobre 8°C, sea superior a la
semana, se sugiere desechar las tórulas.
Antes de Uso: retire las tórula de refrigeración al menos 10 minutos antes de la toma de muestra, para permitir que se encuentre a temperatura ambiente.
NIVELES DE CORTE PARA MONITOREO
Recomendaciones de Monitoreo
Superficies de Áreas Críticas (UCI;UTI; Neonatología )
Superficie
Frecuencia
Superficies Salas de Aislamiento
Aprobado Rechazado
Barandas de
Camas.
Alta de pacientes
Con paciente al azar al menos
2 veces por semana.
<250
Perillas de
Respirador.
Alta de pacientes
Con paciente al azar al menos
2 veces por semana.
<250
>251
Perillas de
Monitores.
Alta de pacientes
Con paciente al azar al menos
2 veces por semana.
<250
>251
Superficie
Barandas de
Camas.
Mesa de
Paciente.
Manilla de
Puerta.
>251
Alta de pacientes
Con paciente al azar al menos
2 veces por semana.
<250
>251
Estación de
Enfermería.
2 veces por semana al azar.
<250
>251
Aprobado Rechazado
Alta de paciente.
<200
>201
Alta de paciente.
<200
>201
Alta de paciente.
<200
>201
Instrumental Quirúrgico
Superficie
Bomba de
Infusión.
Frecuencia
7
Frecuencia
Aprobado
Rechazado
Instrumento representativo de cajas.
Ej: PinzaMosquito,Pinza
Kelly,Portaagujas.
2 veces por día
<250
>251-499
Instrumento alta complejiodad para limpieza.
Ej: Sheaver.
2 veces por día
<250
>251-499
Recomendaciones de Monitoreo
Endoscopios
Superficie
Frecuencia
Aprobado Rechazado
Superficie.
Una muestra cada 10 procedimientos
<250
>251
Canal.
Una muestra cada 10 procedimientos
<250
>251
Higiene de Manos
No existe evidencia de estudios publicados sobre los niveles de corte en Higiene de Manos. Las recomendaciones son para fines educativos en el
cumplimiento de la Higiene de Manos.
Como sugerencia se recomienda para Lavado Clínico de Manos (Agua y Jabón) 250 URL y para Lavado de Manos Quirúrgico (Agua y Jabón
Antiséptico) 150 URL.
No se recomienda para Higuene de Manos con Alcohol medir Bioluminiscencia.
REFERENCIAS BIBLIOGRÁFICAS
1. Management of Multi-Drug Resistant Organisms in Healthcare Settings
(Administración de organismos resistentes a drogas múltiples en centros
de cuidado de la salud), 2006. Pautas de HICPAC disponibles en: www.
cdc.gov/ncidod/dhqp/pdf/ar/mdroGuideline2006.pdf
1.1 McElroy.WD, Proc Natl Acad Sci, USA 33:342-5, 1947 / McCapra F.
The chemistry of bioluminoscence. En:Bioluminiscence in action.Peter J.
Herring Academi.Press London.New York-San Francisco. 1978.
3. Griffith, C.J. et ál., 2007. The effectiveness of existing and modified
cleaning regimen in a Welsh hospital. (La eficacia de regímenes de limpieza existentes y modificados en un hospital galés). Journal of Hospital
Infection. 66:352–359.
4. Lewis, T, et ál., 2008. A modified ATP benchmark for evaluation the
cleaning of some hospital environmental surfaces. (Un estudio comparativo de ATP modificado para evaluar la limpieza de algunas superficies
ambientales de hospitales). Journal of Hospital Infection. 69:156–168.
2. Griffith, C.J. et ál., 2000. An Evaluation of hospital cleaning regimes
and standards (Una evaluación de regímenes y estándares de limpieza en
hospitales). Journal of Hospital Infection. 45:19–28.
REVISORES DEL PROTOCOLO y BIBLIOGRAFÍA .
Esta es una contribución de 3M Chile a la difusión de las Buenas Prácticas en la Atención Clínica por la Seguridad de los pacientes y la
Calidad de la atención.
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AUTORES DE ESTA GUÍA
E.U. Epidemióloga María Eliana Gómez Enfermera
Universidad de Chile.
E.U. Nancy Moya Enfermera Universidad de Chile.
Formación Académica.
Formación Académica:
Magister en Epidemiologia Hospitalaria Universidad de Valparaíso
Master de Calidad y Seguridad del Paciente Universidad de
Murcia España.
Máster en Salud Pública-Gestión en Salud Escuela de Salud Pública
Universidad de Chile.
Master en Administración de Servicios de Salud Universidad de los
Andes Chile.
Diplomada en Calidad Universidad de Chile
Diplomada en Gestión de Calidad Universidad de Chile.
Diplomada en Prevención y Control de IIH Universidad de Chile
Diplomada en Esterilización Universidad Mayor Chile.
Acreditada en Esterilización por CBSPD USA.
Supervisión en IIH Ministerio de Salud Chile.
Evaluadora Sistema Nacional de Acreditación Superintendencia Salud
Acreditada en Esterilización por CBSPD en USA.
Evaluadora Sistema Nacional de Acreditación Superintendencia Salud
Desarrollo Profesional:
Enfermera de Prevención y Control de IAAS-Chile. Hospital del Trabajador
Santiago 1984-2005.
Antecedentes Docentes:
Desarrollo Profesional:
Enfermera Clínica Tratante por 20 años en Hospital del Trabajador
de Santiago.
Enfermera Jefe Central de Esterilización Hospital del Trabajador de
Santiago (7 años)
Docente Post Titulo Calidad y Post Titulo Esterilización y Quirúrgico
Universidad de los Andes Chile.
Enfermera Jefe Central de Esterilización Clínica las Condes de
Santiago (5 años)
Profesor Invitado a Cursos de Prevención de IAAS MINSAL
Antecedentes Docentes:
Otros:
Docente Post Titulo Calidad y Post Titulo Esterilización y Quirúrgico
Universidad de los Andes Chile.
Miembro de la Sociedad Chilena de Epidemiologia y Prevención de
Infecciones Asociadas a la Atención en salud IAAS.
Docente Diplomado Esterilización Universidad Mayor Stgo. Chile.
Professional Services 3M Chile.
Docente Magíster Universidad Mayor.
Otros:
Miembro de la Sociedad Chilena de Profesionales de Esterilización.
Professional Services 3M Chile.
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