Antibodies - Spinreact
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Antibodies - Spinreact
SPIN-HELICOBACTER PYLORI Antibodies One step - Cassette One Step Immunochromatographic assay for the qualitative detection of Helicobacter pylori (H. pylori) in serum or whole blood IVD Store at 2-30ºC INTENDED USE The Spin-Helicobacter Pylori- Antibodies Test is a rapid lateral flow, qualitative immunoassay. It is for health care professional use only. It is intended for use at point of care facilities to detect the presence of IgG antibodies specific to Helicobacter pylori (H. pylori) in human blood or serum. It provides an aid in the diagnosis of infection by H. pylori. This assay provides only a preliminary result. Clinical consideration and professional judgment must be applied, particularly when preliminary positive results are evaluated. A more specific alternate method must be used in order to obtain a confirmed analytical result. SUMMARY AND EXPLANATION OF THE TEST Helicobacter pylori has been associated with a variety of gastrointestinal diseases including gastritis, duodenal and gastric ulcer, non-ulcer dyspepsia, gastric adenocarcinoma and lymphoma.1-3 The exact role that H. pylori plays in gastrointestinal disease still needs to be precisely defined. However, the prevalence rates for H. pylori infection as demonstrated by histological and bacteriological methods can approach 90% in patients who present clinical symptoms of the gastrointestinal diseases listed above. H. pylori does not appear to invade the bloodstream since no isolates yet have been detected using commercial blood culture methods. H. pylori infections occur in human populations throughout the world. In developed countries, about 50% of the population may have H. pylori infection by the age of 60 years, while only 10-20% of adults in the third decade have it.4, 5 In patients who present clinical symptoms relating to the gastrointestinal tract there are two major methods of investigation: invasive and noninvasive. Invasive methods include culture of gastric biopsy samples, histologic examination of stained biopsy specimens, or direct detection of the urease activity in the biopsy (CLO test). These methods need to obtain a biopsy sample by endoscopy, which is expensive, and usually results discomfort and risk to the patient. Noninvasive techniques include urea breath tests and serological methods. Urea breath test requires the use of a small amount of radioactivity and a mass spectrometer. Serologic tests are employed to detect antibodies as human immune response to H. pylori. Two methods appear to be of great interest regarding their use in H. Pylori routine serology, namely the ELISA and the Western immunoblot because they offer the most versatiltity in regards to immunoglobulin specificity and relative ease of use. 5 This device detects IgG antibodies specific to H. pylori infection in patient’s blood or serum. It is a noninvasive method and does not use radioactive isotopes; the assay procedures are easy and do not require professional training; it provides a rapid result. It is a useful on-site aid in the diagnosis of H. pylori infection. PRINCIPLE OF THE METHOD This assay is a double antigen chromatographic lateral flow immunoassay. The test strip in the device includes: 1) a burgundy-colored conjugate pad containing colloidal gold coupled with H. pylori antigens, and 2) nitrocellulose membrane containing a test line (T line) and a control line (C line). The T line is coated with H. pylori antigens, and the C line is coated with goat anti-H. pylori antibody. The antigens used in this device are from H. pylori cell lysate. When IgG antibodies specific to H. pylori are present in the specimen, the T line will become a burgundy-colored band. If antibodies to H. pylori are not present or are present below the detectable level, no T line will develop. The C line should always appear as a burgundy-colored band regardless of the presence of antibodies to H. pylori. The C line serves as an internal qualitative control of the test system to indicate that an adequate volume of specimen has been applied and the flow occurred. MATERIALS SUPLLIED SPECIMEN COLLECTION AND STORAGE Serum 1. Follow standard laboratory procedures to collect serum specimens. 2. Serum specimens can be stored at 9-30°C (46-86°F) for 8 hours, at 2-8°C (36-46°F) for one week, and at ≤ -20°C (-4°F) or lower for long term storage. Repeatedly frozen and thawed specimens are not recommended for this assay. 3. Any sediment in serum specimens should be removed by centrifugation. Avoid using any turbid specimens, which may be contaminated by microorganisms. Whole Blood 1. Clean patient’s finger with an alcohol swab. Wait until it is dry. 2. Puncture the fingertip with the lancet. Wipe away first sign of blood. 3. Use the provided pipette to pick up the blood, and apply one drop of the blood to the sample well of the device. Then, follow the procedure. PRECAUTIONS 1. The instructions must be followed to obtain accurate results. 2. Appropriate precautions are necessary in the collection, handling of the specimens and used assay materials as potentially biohazardous. 3. For each specimen, use a disposable pipette, and a test device. Do not reuse the pipette and device. 4. Do not use kit beyond the expiration date, which appears on the package label. Do not mix reagents or components from different lots of test kits. ASSAY PROCEDURE 1. Refrigerated specimens and other test materials, including devices, must be equilibrated to room temperature before testing to avoid invalid results. 2. Remove the device from the pouch and place it on a flat surface. Label the device with specimen identification. 3. Holding the dropper vertically, add one drop (about 40 l) of fresh blood or serum specimen into the sample well. Allow about 30 second for the specimen to be absorbed totally. 4. Discard the first three drops of wash buffer from the squeeze bottle of the wash buffer, if applicable. Then add three drops (about 120 l) of wash buffer into the sample well. Note: If migration is not observed in 30 seconds in the results window, add one or two extra drops of wash buffer. 5. Strong positive results may be observed in 2-3 minutes. Weak positive results may take a longer time, up to 7 minutes. DO NOT INTERPRET THE RESULTS AFTER 7 MINUTES. INTERPRETATION OF RESULTS C T C T (+) POSITIVE C T C T (-) NEGATIVE INVALID Positive: If both the C line and T line appear, the result indicates that the IgG antibodies specific to H. pylori are detected and the result is positive. A faint line in test region indicates a borderline specimen, which should be retested using an alternative method for confirmation. Negative: If only the C line appears in the control region, the test indicates that no antibodies to H. pylori are detected and the result is negative. Invalid: When no control line appears within 5 minutes, repeat the test with a new test device. Ref.1504030 5 test devices- 1 diluent vial. Ref.1504031 20 test devices- 1 diluent vial. MATERIAL REQUIRED BUT NOT PROVIDED Lancet or other blood collection device. Timer STORAGE AND STABILITY Store kit at room temperature 2-30 C. Kit contents are stable for 2 years or until the expiration date printed on the label, whichever comes first. Freezing or exposing the kit to temperatures over 30 C may reduce the shelf life or damage the device. OSIS12-I 09/08/11 QUALITY CONTROL PROCEDURE Built-in Control Features This test contains a built-in quality control feature, the C line. The appearance of the burgundy C line indicates that that an adequate volume of specimen and wash buffer has been applied and the flow occurred. External Quality Control External controls are recommended, positive and negative, to monitor the performance of the assay. SPINREACT,S.A./S.A.U. Ctra.Santa Coloma, 7 E-17176 SANT ESTEVE DE BAS (GI) SPAIN Tel. +34 972 69 08 00 Fax +34 972 69 00 99. e-mail: [email protected] SPIN-HELICOBACTER PYLORI Antibodies One step - Cassette LIMITATIONS 1. This test is a qualitative assay for professional in vitro diagnostic use only. 2. A positive result does not distinguish active infection from colonization of H. pylori. Therefore, positive results should always be evaluated with other confirmatory methods available to the physician. This assay has not been established for patients less than 19 years of age. 3. Literature references have suggested cross reactivity of IgG antibody with other closely related organisms such as Borrelia burgdorferi and Pseudomonas species. However, performance of this assay has not been evaluated with these organisms. Therefore, the specificity of this device is not known if this organism is encountered. 4. Not recommended for final confirmatory and blood bank screening use. Expected Values H. pylori infections occur in human populations throughout the world, but the prevalence of infection in the population varies with age, standards of hygiene, geographical regions, and probably socioeconomic status. In developed countries, about 50% of the population may have H. pylori infection by the age of 60 years, while only 10-20% of adults in the third decade of life have it. People in developing countries tend to have higher prevalence5. Streptococcus Staphylococcus 2. 10 10 Conc. Albumin Bilirubin Hemoglobin Glucose Uric Acid Lipids 20 mg/ml 10 µg/ml 15 µg/ml l 20 mg/ml 200 µg/ml 20 mg/ml SpinPositive H.pylori Negative Antibodies test Total Clinical confirmed results Positive Negative 137 9 7 143 Analytes 144 152 Total 146 150 Specimens Positive (+) Negative (-) + + + + + + - Some other Common Biological Analytes were spiked into the H. pylori positive and negative specimens and tested separately. No significant interference was observed at the levels listed in the table below. Acetaminophen Acetoacetic Acid Acetylsalicylic Acid Benzoylecgonine Caffeine DMSO Conc. (µg/ml) 200 200 200 100 200 5% EDTA Ethanol Gentisic Acid - Hydroxybutyrate Methanol Phenothiazine Phenylpropanolamine Salicylic Acid 800 1.0 % 200 20,000 10.0 % 200 200 200 PERFORMANCE CHARACTERISTICS Sensitivity and Specificity This device was evaluated with 296 confirmed clinical serum specimens, 144 were positive and 152 were negative. All the specimens were blind labeled. The evaluations were conducted in house. - Potentially cross-reactive endogenous substances including common serum components, such as lipids, hemoglobin, bilirubin, were spiked at high concentrations into the H. pylori positive and negative specimens and tested, separately. No cross reactivity or interference was observed to the device. Analytes 3. + + Specimens Positive (+) Negative(-) + + + + + + + + + + + + + + - 296 Reproducibility The sensitivity of this device is 95.1% (137/144) and the specificity is 94.1% (143/152). Reproducibility studies were performed on 20 negative, 20 borderline positive and 20 positive serum specimens at three physician’s office laboratories (POL). Each specimen was run in triplicate for three days at each POL. All the intra-assay agreements were 100% at two sites, and 99.4% at one site. The inter-assay agreement was 100% at two sites and 99.8% at one. The inter-site agreement was 99.9%. In addition, the H. pylori Rapid Whole Blood/Serum Test was evaluated with a panel of sixty (60) clinical serum specimens and a panel of sixty (60) whole blood samples spiked with different levels of IgG antibodies specific to H. pylori. In each panel there were twenty (20) negative, twenty (20) border-line positive, and twenty (20) positive, accordingly. The samples were blind labeled and tested at three physician’s office laboratories (POL). In summary, results obtained were the same as expected for all specimens at all evaluation sites except that one borderline positive was missed at one site. The agreement for clinical serum specimens was 100% at all three evaluation sites. The agreement for spiked whole blood was 100% at two sites and 98.3% at one site. Comparison with a legally marketed device A side-by-side comparison study between Spin-Helicobacter PyloriAntibodies Test and a marketed device was conducted. Two hundred and ninety-six (296) clinical serum specimens were evaluated with the Spin-Helicobacter Pylori- Antibodies Test and the marketed device. The results were summarized in the table below. Marketed H. pylori Test Positive Negative Spin-H.pylori Positive Antibodies Negative Test Total Total 142 3 4 147 146 150 145 151 296 REFERENCES The agreement between these two devices is 97.9% (142/145) for positive specimens, and 97.4% (147/151) for negative specimens. This study demonstrated that the Spin-Helicobacter Pylori- Antibodies Test is substantially equivalent to the marketed device. 1. 2. 3. Cross Reactivity and Interference 4. 1. 5. Other closely related microorganisms were evaluated for cross reactivity with the test. Proteins of those microorganisms were spiked into the H. pylori positive and negative specimens at a high concentration and tested separately. None of the microorganisms affected the test results, positive or negative. Analytes E. coli C. coli C. jejuni C. fetus Proteus N. gonorrhea OSIS12-I 09/08/11 Conc.(mg/ml) 10 10 10 10 10 10 Specimens Positive Negative + + + + + + - O’Connor, JH., Helicobacter pylori and gastric cancer: a review and hypothesis. Eur. J. Gastro. Hepa. 1992; 6: 103-109. Mcguigan JE., Peptic ulcer and gastritis. In Harrison’s Principles of Internal Medicine, 12th Edition, 1988, Chapter 238, 1229-1248. Cover TL. and Blaser MJ., Helicobacter pylori: A Bacterial Cause of Gastritis, Peptic Ulcer Disease, and Gastric Cancer, ASM News, 1995; 61: 21-26. Podolsky I, Lee E, Cohen R, Peterson WL. Prevalence of C. pylori in healthy subjects and patients with peptic diseases. Gastroenteroloty 1989: 96: Suppl: A394. Abstract. Kist M., Immunology of Helicobacter pylori. In Helicobacter pylori in peptic ulceration and gastritis, edited by Marshall BJ., McCallum RW., and Guerrant RL., 1991, Chapter 8, 92-110. PACKAGING Ref. 1504030 Ref. 1504031 Cont 5 Cards, 1 Diluent 20 Cards, 1 Diluent SPINREACT,S.A./S.A.U. Ctra.Santa Coloma, 7 E-17176 SANT ESTEVE DE BAS (GI) SPAIN Tel. +34 972 69 08 00 Fax +34 972 69 00 99. e-mail: [email protected] SPIN-HELICOBACTER PYLORI Anticuerpos One step - Cassette Ensayo immunocromatrográfico One Step para la detección cualitativa de Helicobacter pylori (H. pylori) en suero o sangre total IVD Conservar a 2-30ºC USO RECOMENDADO El test Spin-Helicobacter Pylori-Anticuerpos es un inmunoensayo cualitativo rápido, de flujo lateral. Sólo para uso profesional. Está destinado a la detección de la presencia de anticuerpos IgG específicos para Helicobacter pylori (H. pylori) en sangre o suero humano. Proporciona una ayuda en el diagnóstico de infección por H. pylori. El test se usa únicamente para obtener un resultado preliminar. En cualquier caso el resultado debe ser interpretado por un profesional, particularmente al evaluar un resultado preliminar positivo. Para confirmar los resultados analíticos es necesario un método alternativo más específico. RESUMEN Y EXPLICACIÓN DEL TEST Helicobacter pylori ha siso asociado a una variedad de enfermedades gastrointestinales incluyendo gastritis, úlcera duodenal y gástrica, dispepsia no 1-3 ulcerosa, linfoma y adenocarcinoma gástrico. El rol exacto jugado por H. pylori en la enfermedad gastrointestinal todavía necesita ser definido con precisión. Sin embargo, la tasa de prevalencia de infección por H. pylori, como se demuestra por métodos histológicos y bacteriológicos, puede aproximarse al 90% en pacientes que presenten síntomas clínicos de las enfermedades gastrointestinales mencionadas. H. pylori no parece invadir la sangre puesto que todavía no se ha aislado utilizando los métodos comerciales de cultivo de sangre. Las infecciones de H. pylori tienen lugar en poblaciones humanas de todo el mundo. En países desarrollados, cerca del 50% de la población puede tener una infección por H. pylori alrededor de los 60 años, mientras que sólo un 4, 5 10-20% de los adultos en la tercera década la han tenido. En pacientes que presenten síntomas clínicos relacionados con el tracto gastrointestinal hay dos métodos principales de investigación: invasiva y no invasiva. Los métodos invasivos incluyen el cultivo de muestras de biopsias gástricas, exámenes histológicos de muestras de biopsias teñidas, o detección directa de la actividad de ureasa en la biopsia (CLO test). Estos métodos necesitan la obtención de una muestra de biopsia por endoscopia, la cual resulta cara, y normalmente supone molestias y riesgo para el paciente. Las técnicas no invasivas incluyen el test respiratorio de la urea y métodos serológicos. El test respiratorio de la urea requiere del uso de una pequeña cantidad de radioactividad y de un espectrómetro de masa. Los test serológicos son empleados para la detección de anticuerpos como respuesta inmune humana a H. pylori. De ellos los de mayor interés son ELISA y Western immunoblot, ya que ofrecen mayor versatilidad en cuanto a la especificidad de 5 la inmunoglobulina y una relativa facilidad de uso. Esta placa detecta anticuerpos IgG específicos para la infección de H. pylori en muestras de suero o sangre. Es un método no invasivo y no utiliza isótopos radioactivos; Los procedimientos del ensayo son fáciles y no requieren una formación profesional. Proporciona un resultado rápido y es una ayuda práctica para el diagnóstico in situ de la infección de H. pylori. PRINCIPIO DEL MÉTODO Este es un inmunoensayo cromatográfico de flujo lateral de doble antígeno. El test incluye: 1) un conjugado coloreado de oro coloidal unido a antígenos H. pylori, y 2) una membrana de nitrocelulosa con una línea Test (línea T) y una línea control (línea C). La línea T está cubierta de antígenos de H. pylori, y la línea C está recubierta de anticuerpos de cabra anti-H. pylori. Los antígenos usados en esta placa provienen de un lisado de células de H. pylori. Cuando se encuentran presentes en la muestra anticuerpos IgG específicos para H. pylori, la línea T se convierte en una banda coloreada. Si los anticuerpos para H. pylori no están presentes o lo están por debajo del nivel de detección, no se desarrolla la banda T. La línea C debe aparecer siempre coloreada independientemente de la presencia de anticuerpos para H. pylori. La línea C funciona como control interno cualitativo indicando si el volumen de muestra aplicado y la migración de los reactivos han sido correctos. REACTIVOS Y MATERIAL PROPORCIONADO Ref.1504030 5 placas -1 vial de diluyente Ref.1504031 20 placas -1 vial de diluyente MATERIAL NECESARIO NO SUMINISTRADO Aguja u otro método de recolección de sangre Cronómetro TOMA DE MUESTRA Suero 1. Seguir los procedimientos estándar de laboratorio para la toma de muestras de suero. 2. Las muestras de suero pueden conservarse hasta 8 horas a 9-30°C (4686°F), una semana a 2-8°C (36-46°F), para tiempos de almacenamiento superiores mantener a ≤ -20°C (-4°F). Para este ensayo no está recomendado repetidas congelaciones y descongelaciones. 3. Cualquier sedimento presente en las muestras de suero debe ser eliminado por centrifugación. Evitar el uso de muestras turbias, que puedan estar contaminadas por microorganismos. Sangre total 1. Limpiar el dedo del paciente con un algodón empapado en alcohol y esperar a que se seque. 2. Pinchar la yema del dedo del paciente con la aguja, eliminado el primer signo de sangre. 3. Utilizar el gotero suministrado para recoger la sangre y aplicar una gota de sangre en el pocillo de muestra. A continuación seguir el procedimiento. PRECAUCIONES 1. Se deben seguir las instrucciones incluidas en el kit para obtener resultados fiables. 2. Tomar las precauciones necesarias durante la toma de muestra y su manipulación; Tratar muestra y material de ensayo como potencialmente infeccioso. 3. Para cada muestra, utilizar una pipeta desechable y una placa. No reutilizar la pipeta ni la placa. 4. No usar tests caducados. No mezclar componentes de distintos lotes de kits. PROCEDIMIENTO 1. Atemperar la muestra y los otros materiales necesarios para el test, incluidas las placas, antes realizar el ensayo. 2. Extraer la placa del sobre y colocarla sobre una superficie plana. Identificar cada placa con los datos de la muestra. 3. Utilizar el gotero suministrado para añadir una gota (aprox. 40 μL) de la muestra en el pocillo muestra de la placa, manteniendo el gotero en posición vertical. Esperar unos 30 segundos para que la muestra sea absorbida totalmente. 4. Descartar las tres primeras gotas de diluyente. Añadir tres gotas (aprox. 120 μL) de diluyente en el pocillo muestra. Nota: si no se observa migración en 30 segundos, añadir 1 ó 2 gotas más de diluyente. 5. Los resultados fuertemente positivos deben observarse en 2-3 minutos. Los resultados débilmente positivos pueden requerir de más tiempo, hasta 7min. NO INTERPRETAR RESULTADOS TRANSCURRIDOS 7 MINUTOS. INTERPRETACIÓN DE LOS RESULTADOS C T C T (+) POSITIVO C T C T (-) NEGATIVO NO VALIDO Positivo: Si aparecen ambas líneas C y T, el resultado indica la presencia de anticuerpos IgG específicos para H. pylori. Si la línea T es débil el resultado debe ser confirmado con un método alternativo más específico. Negativo: Si sólo aparece la línea C de la región control, el test no ha detectado anticuerpos para H. pylori. No válido: Si no aparece una línea C en la zona del control tras 5 minutos de la adición de la muestra, repetir el test con una nueva placa. CONTROL DE CALIDAD CONSERVACIÓN Y ESTABILIDAD Conservar el kit a temperatura ambiente 2-30ºC. Cada placa puede usarse hasta la fecha de caducidad indicada en la etiqueta si se conservan, sin abrir, en el envase original. No congelar ni exponer a temperaturas superiores a 30°C (86°F). OSIS12-E 09/08/11 Control de Calidad interno El test contiene un control de calidad interno, la línea C. La presencia de esta línea indica que se ha usado un volumen correcto de muestra y diluyente, y que los reactivos han migrado correctamente. Si no aparece la línea C, el test debe considerarse no válido. En este caso, es aconsejable revisar las instrucciones y repetir el test con una nueva placa. SPINREACT,S.A./S.A.U. Ctra.Santa Coloma, 7 E-17176 SANT ESTEVE DE BAS (GI) SPAIN Tel. +34 972 69 08 00 Fax +34 972 69 00 99. e-mail: [email protected] SPIN-HELICOBACTER PYLORI Anticuerpos One step - Cassette Control de Calidad externo Se recomiendan controles externos, positivos y negativos, para controlar el desarrollo del ensayo. LIMITACIONES DEL PROCEDIMIENTO 1. El test es sólo para diagnóstico in vitro profesional. 2. Un resultado positivo no distingue entre una infección activa y una colonización por H. pylori. En consecuencia, los resultados positivos siempre deben ser evaluados con otros métodos confirmatorios disponibles. 3. Referencias literarias sugieren reacciones cruzadas de los anticuerpos IgG con otros microorganismos estrechamente relacionados tales como Borrelia burgdorferi y Pseudomonas especies. Sin embargo, este ensayo no ha sido evaluado con tales organismos. Así pues, la especificidad de la placa se desconoce en su presencia. 4. No recomendado para confirmaciones finales, ni rastreo de bancos de sangre. VALORES ESPERADOS Las infecciones por H. pylori tienen lugar en poblaciones de todo el mundo, pero la prevalencia de la infección varía con la edad, estándares de higiene, regiones geográficas, y probablemente, estatus socioeconómico. En países desarrollados, cerca de un 50% de la población puede presentar infección por H. pylori hacia los 60 años, mientras que sólo un 10-20% de los adultos en la tercera década de vida la tienen. Las personas de países desarrollados tienden a tener una prevalencia mayor5. Analitos E. coli C. coli C. jejuni C. fetus Proteus N. gonorrhea Streptococcus Staphylococcus 2. Albúmina Bilirrubina Hemoglobina Glucosa Ácido úrico Lípidos 3. Acetaminofeno Ácido acetoacético Ácido acetilsalicílico Benzoilecgonina Cafeína DMSO EDTA Etanol Ácido gentísico - Hidroxibutirato Metanol Fenotiacina Fenilpropalonamina Ácido salicílico Spin-H.pylori Positivo Anticuerpos Negativo Test TOTAL 144 152 Total 146 150 296 La sensibilidad para esta placa es del 95.1% (137/144) y la especificidad es del 94.1% (143/152). Comparación con placas legales del mercado Se realizó un estudio comparativo entre el Test Spin-Helicobacter Pylori-Anticuerpos y otra placa comercializada. Se evaluaron doscientas noventa y seis muestras clínicas (296). Los resultados se resumen en la siguiente tabla. Spin-H.pylori Positivo Anticuerpos Negativo Test TOTAL Test H. pylori comercializado Positivo Negativo 142 4 3 147 145 151 Total 146 150 296 Conc. 20 mg/ml 10 µg/ml 15 µg/ml 20 mg/ml 200 µg/ml 20 mg/ml Muestras Positiva (+) Negativa (-) + + + + + + - Otros analitos biológicos comunes fueron añadidos a muestras H. pylori positivas y negativas. No se observó interferencia significativa alguna con las concentraciones listadas en la siguiente tabla. Analitos Sensibilidad y especificidad Esta placa fue evaluada con 296 muestras clínicas de suero, 144 eran positivas y 152, negativas. 10 10 10 10 10 10 10 10 Muestras Positiva Negativa + + + + + + + + - Sustancias endógenas potencialmente capaces de provocar reacciones cruzadas incluyendo componentes comunes del suero tales como lípidos, hemoglobina, bilirrubina fueron adicionadas en altas concentraciones a muestras H. pylori positivas y negativas. No se observó reactividad cruzada o interferencia alguna. Analitos CARACTERÍSTICAS DEL MÉTODO Resultados clínicos confirmados Positivo Negativo 137 9 7 143 Conc.(mg/ml) Conc. (µg/ml) 200 200 200 100 200 5% 800 1.0 % 200 20,000 10.0 % 200 200 200 Muestras Positiva (+) Negativa(-) + + + + + + + + + + + + + + - Reproducibilidad Los estudios de reproducibilidad se realizaron en tres laboratorios oficiales (POL) con 20 muestras de suero negativas, 20 positivas dudosas y 20 positivas. Cada muestra fue evaluada por triplicado en cada POL durante tres días. Los porcentajes de concordancia intra-ensayo fueron del 100% en dos de los POLs , y del 99.4% para el tercero. El porcentaje de concordancia inter-ensayo fue del 100% en dos de los POLs y del 99.8% en el tercero. La concordancia entre los diferentes sitios fue del 99.9%. Por otro lado, el test fue evaluado con un panel de 60 muestras de suero y un panel de 60 muestras de sangre total enriquecida con diferentes niveles de anticuerpos IgG específicos para H. Pylori. En cada panel había 20 muestras negativas, 20 positivas dudosas y 20 positivas. Las muestras fueron evaluadas en tres laboratorios oficiales (POL). El porcentaje de concordancia para las muestras de suero fue 100% en los 3 POLs. El porcentaje de concordancia para las muestras de sangre total enriquecida fue 100% en dos de los POLs y del 99.3% en el tercero. REFERENCIAS La concordancia entre estas dos placas fue del 97.9% (142/145) para las muestras positivas, y del 97.4% (147/151) para las muestras negativas. Este estudio demostró que el Test Spin-Helicobacter PyloriAnticuerpos es sustancialmente equivalente a la otra placa comercializada. Reacciones cruzadas e Interferencia 1. Se evaluó la reactividad cruzada del test con otros microorganismos estrechamente relacionados. Se adicionó proteínas de tales microorganismos en muestras H. pylori positivas y negativas. Ninguno de los siguientes microorganismos afectaba a los resultados positivos o negativos. 1. 2. 3. 4. 5. O’Connor, JH., Helicobacter pylori and gastric cancer: a review and hypothesis. Eur. J. Gastro. Hepa. 1992; 6: 103-109. Mcguigan JE., Peptic ulcer and gastritis. In Harrison’s Principles of Internal Medicine, 12th Edition, 1988, Chapter 238, 1229-1248. Cover TL. and Blaser MJ., Helicobacter pylori: A Bacterial Cause of Gastritis, Peptic Ulcer Disease, and Gastric Cancer, ASM News, 1995; 61: 21-26. Podolsky I, Lee E, Cohen R, Peterson WL. Prevalence of C. pylori in healthy subjects and patients with peptic diseases. Gastroenteroloty 1989: 96: Suppl: A394. Abstract. Kist M., Immunology of Helicobacter pylori. In Helicobacter pylori in peptic ulceration and gastritis, edited by Marshall BJ., McCallum RW., and Guerrant RL., 1991, Chapter 8, 92-110. PRESENTACIÓN Ref. 1504030 Ref. 1504031 OSIS12-E 09/08/11 Cont 5 Placas, 1 Diluyente 20 Placas, 1 Diluyente SPINREACT,S.A./S.A.U. Ctra.Santa Coloma, 7 E-17176 SANT ESTEVE DE BAS (GI) SPAIN Tel. +34 972 69 08 00 Fax +34 972 69 00 99. e-mail: [email protected]