RELACIONES ENTRE ACTIVIDAD BIOLÓGICA, C
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RELACIONES ENTRE ACTIVIDAD BIOLÓGICA, C
RELACIONES ENTRE ACTIVIDAD BIOLÓGICA, C-ORGÁNICO Y N-TOTAL DURANTE EL COMPOSTAJE Y VERMICOMPOSTAJE Soriano, M.D.1, García-España, L.1, García-Mares, P.1, Roca-Pérez, L., 2 Boluda, R.2 1 Escuela Técnica Superior de Agronomía y del Medio Natural, Universitat Politècnica de València, Camí de Vera, s/n, 46022, València, España. [email protected], telf. 963879338, fax 963877139 2 Facultad de Farmacia, Universitat de València. Av Vicent Andrès Estellès s/n, 46100, Burjassot, España, [email protected]. tel. 963544725, fax 963543253 RESUMEN Aunque en general las características químicas y microbiológicas de las compost y vermicompost suelen ser muy semejantes, en la mayor parte de los casos la respuesta de los cultivos a la aplicación de vermicompost suele ser superior a la del compost convencional. Con idea de evaluar la calidad y las diferencias de esos dos tipos de compostaje se analizó el C-orgánico, N-total y sus relaciones con los microorganismos, durante la producción de compost y vermicompost de residuos de podas de diferentes cultivos tales como cítricos, higuera y almendro. El sustrato se depositó en contenedores y se evaluaron, cada cuatro semanas durante su transformación parámetros químicos, estudiando el efecto sobre las lombrices. Se analizan los productos finales determinando la madurez y estabilidad, así como las variaciones en el N-total y la relación C/N, porcentaje de materia orgánica total y fracciones orgánicas. Los resultados indican diferencias en los parámetros en el proceso de compostaje y vermicompostaje frente a los residuos de partida. Palabras clave: Compostaje y vermicompostaje, actividad biológica, Eisenia foetida. Introducción La eliminación de restos de poda así como de residuos agrícolas constituye un problema a causa de su acumulación en determinadas épocas (Sellami et al., 2008; Seoanez, 2000). Mediante el compostaje y vermicompostaje es posible biodegradar, estabilizar y madurar dichos residuos aumentando en ocasiones 1 su contenido de nutrientes al mezclarlos con otras sustancias difíciles de eliminar (Nogales et al., 2006; Nogales et al., 2008). Con idea de comparar los productos finales obtenidos por estos dos procesos se estudian los productos iniciales y finales tras cuatro meses de tratamiento, monitorizando el proceso mediante el análisis de las lombrices y de las actividades enzimáticas. Material y métodos La experiencia se realizó en recipientes de pvc de 30 cm de diámetro y 50 cm de altura, colocando las lombrices desarrolladas en las parcelas de la Universidad Politécnica de Valencia, sobre los restos de poda de las tres especies: almendro, higuera y cítrico. El sustrato se coloca en ocho contenedores para cada especie, tres para compostaje y otros tres para vermicompostaje, con un testigo en cada uno de los casos. El conjunto fue analizado químicamente en el momento inicial y tras cuatro meses de compostaje y vermicompostaje. Se adicionan lombrices de Eiseria foetida en una proporción de 100 g de biomasa de lombriz por recipiente de vermicompostaje. Durante 16 semanas se mantiene una humedad del 70% y 80% respectivamente para compostaje y vermicompostaje. El riego se mantiene por goteo y tras la experiencia las muestras se llevaron al laboratorio para analizar por triplicado, donde se secaron con estufa de aire a 60ºC. Figura 1. Preparación de las muestras Figura 2. Preparación de las tiras API ZYM Al final de la experiencia se contabilizan las lombrices. Se realizan los análisis convencionales (M.A.P.A., 1986), estudiando la fracción orgánica (Nelson, et al., 1982). Se realiza el Análisis Elemental para la determinación del contenido de Carbono, Hidrógeno, Nitrógeno y Azufre, donde, la muestra se somete a una 2 Oxidación térmica entre 1.600-1.800 ºC, en ambiente de Oxígeno, con lo que se consigue la conversión total y cuantitativa de los componentes en CO2 (Carbono), H2O (Hidrógeno), N2 (Nitrógeno) y Azufre, estos productos gaseosos son arrastrados al módulo de separación donde se produce la adsorción selectiva de CO2 (Columna de Cobre), H2O (Columna de Plata), para ser separados y medidos por el Detector de Conductividad Térmica. Para la determinación se trituró y posteriormente pulverizaron las muestras secas. La Actividad Enzimática se obtuvo mediante el sistema API (Biomerieux®), cuya galería consta de 20 microtubos (cúpulas) cuyo fondo está constituido por un soporte que contiene un substrato enzimático con un tampón (Tabatabai, et al., 1969). Este sistema API permite detectar actividades enzimáticas de un extracto complejo no purificado. Resultados Se ha observado que existe un mecanismo regulador del crecimiento de E. foetida para la cual la población total de lombrices se estabiliza alrededor de un cierto número de individuos debido a que un gran aporte de alimento y el control de las condiciones ambientales favorecen, a corto plazo, la rápida colonización del sustrato y una posterior superpoblación de lombrices en éste (Aira et al., 2004). A partir de aquí, disminuye la tasa reproductiva, apreciándose además una disminución del tamaño de las lombrices, a pesar de la abundancia de alimento (Nogales et al., 2008). Los resultados obtenidos indican un adecuado desarrollo de las lombrices en todos los medios de compostaje que alcanzaron su máximo aproximadamente a los dos meses, disminuyendo su número después de este periodo. Los procesos producidos durante el compostaje y vermicompostaje modificaron los residuos obtenidos produciendo unos compost maduros con niveles elevados de materia orgánica y nitrógeno (Linn et al., 1984). En las muestras iniciales los contenidos de humedad son más elevados que en los respectivos compost finales, reduciéndose así mismo el volumen de la muestra. Las relaciones C/N son elevadas principalmente para la muestra de cítrico, mientras que los contenidos de azufre presentan valores bajos, 3 obteniendo los más elevados en el contenido de hidrógeno total para la muestra de los residuos de higuera (cuadro 1). Cuadro 1. Caracterización analítica de los residuos de olivo, higuera y cítrico PARÁMETRO R. olivo R. higuera Humedad % 75,3 (0,20) 85,3 (0,40) 72,8 (2,40) Relación C/N 12,6 (0,10) 16,3 (0,30) 29,3 (0,30) Nitrógeno Total (%) 2,1 (0,10) Carbono Total (%) 26,5 (0,00) 32,7 (0,10) 23,5 (0,40) Azufre Total (%) 0,09(0,00) 0,05(0,03) 0,09(0,01) Hidrógeno Total (%) 5,35 (0,02) 6,25(0,01) 4,23 (0,02) 2,0 (0,10) R. cítrico 0,8 (0,01) Cuadro 2. Características de los vermicompost obtenidos PARÁMETRO R. olivo R. higuera R. cítrico Humedad % 22(0,60) 30(1,40) 18(1,40) CE (dS/m) 1:5 1,7(0,06) 1,5(0,12) 1,5(0,03) pH 1:2,5 8,0(0,10) 6,8(0,10) 7,7(0,10) Relación C/N 7,3(0,04) 18,5(0,79) 8,0(0,16) Nitrógeno Total (%) 2,56(0,021) 2,25(0,06) 1,03(0,04) Carbono Total (%) 22,2(0,012) 20,1(0,13) 13,9(0,06) Azufre Total (%) 0,09(0,00) 0,05(0,03) 0,06(0,01) Hidrógeno Total (%) 2,35 (0,02) 4,25(0,01) 2,33 (0,02) Los niveles de carbono total de los compost y vermicompost son del orden de 14 a 34% dependiendo del tipo de proceso realizado. Este resultado nos indica la importancia del tipo de sustratos a compostar o vermicompostar, así como los agentes biológicos que participan en el proceso de transformación. En el vermicompost además de los microorganismos acumulados en el sustrato 4 intervienen también las lombrices, y ello acelera la descomposición y así el descenso de los niveles de materia orgánica, comparando con los valores en los materiales iniciales del cuadro 1 que son más acusados para este tratamiento. En el caso del N total (cuadros 2 y 3) se observa, en general, un aumento de N para los tres residuos utilizados. Los contenidos de azufre apenas sufren cambios tras los compostajes, mientras que los valores de hidrógeno tienden a disminuir tras el proceso. Esto mismo han observado diferentes autores tras el vermicompostaje, (Aranda et al., 1999; Brow et al 2004). Cuadro 3. Características de los compost obtenidos PARÁMETRO R. olivo R. higuera R. cítrico Humedad % 18(0,52) 17(1,24) 12(1,42) CE (dS/m) 1:5 1,5(0,10) 2,5(0,10) 1,1(0,30) pH 1:2,5 8,5(0,10) 6,5(0,10) 6,7(0,70) Relación C/N 7,4(0,04) 18,50(0,79) 8,04(0,16) Nitrógeno Total (%) 2,5(0,20) 2,2(0,10) 1,3(0,02) Carbono Total (%) 26,2(0,10) 25,15(0,10) 33,9(0,20) Azufre Total (%) 0,08(0,00) 0,04(0,03) 0,08(0,01) Hidrógeno Total (%) 5,00 (0,02) 5,25(0,01) 4,09 (0,02) Los resultados de la actividad enzimática de las muestras de vermicompost se muestran en el cuadro 4. Se tomaron muestras en los distintos tratamientos para medir la actividad de las diferentes enzimas. La actividad de esas enzimas fue menor en los tratamientos con lombrices que en los que no se aplicaron. La actividad enzimática disminuyó en relación directa con la madurez de la composta. Los valores de las actividades enzimáticas también presentaron máximos a los dos meses disminuyendo a continuación, siendo inferiores los valores enzimáticos en vermicompostaje que en compostaje. 5 Cuadro 4. Resultados del estudio de la actividad enzimática ENZIMA TESTADO SUSTRATO Fosfatasa alcalina 2-naftil fosfato Fosfatasa ácida 2-naftil fosfato Naftol-AS-BIfosfosfohidrolasa Naftol-AS-BI-fosfato Esterasa (C4) 2-naftil-butirato Lipasa (C14) 2-naftil-miristato Esterasa Lipasa (C8) 2-naftil-caprilato Leucina arilamidasa L-leucil-2-naftilamina Valinaarilamidasa L-valil-2-naftilamida Cistina arilamidasa L-cistil-2-nafthilamida N-benzoil-DLarginina-2Tripsina naftilamida N-glutarilfenilalanina-2α-quimotripsina naftilamida 6-Br-2-naftil-α-Dα-galactosidasa galactopiranósido 2-naftil-βDgalactopiranósido β-galactosidasa Naftol-AS-BIβDβ-glucoronidasa glucurónido 2-naftil-αDα-glucosidasa glucopiranósido 6-Br-2-naftil-β-Dglucopiranósido β-glucosidasa N-acétil-β1-naftil-N-acetil-βDglucosaminidasa glucosamínido 6-Br-2-naftil-α-Dα-mannosidasa mannopiranósido 2-naftil-αLfucopiranósido α-fucosidasa VERMICOMPOST ηmoles Olivo Higuera Cítrico 4(0) 4(0) 5(0) 4(0) 5(1) 3(0) COMPOST ηmoles Olivo Higuera Cítrico 5(0) 4(0) 5(0) 3(0) 5(1) 5(0) 4(0) 3(1) 3(0) 3(0) 4(0) 1(0) 1(0) 2(1) 3(0) 5(0) 5(1) 4(1) 1(0) 0(0) 3(1) 5(0) 4(0) 4(0) 4(1) 2(1) 0(0) 3(1) 5(0) 5(0) 5(0) 4(1) 2(1) 0(0) 2(1) 3(0) 5(0) 5(1) 5(1) 1(0) 0(0) 3(0) 3(1) 5(0) 5(0) 5(0) 4(1) 2(1) 1(0) 0(0) 0(0) 0(0) 0(0) 0(0) 1(0) 0(0) 0(0) 0(0) 0(0) 0(0) 0(0) 0(0) 1(1) 1(1) 0(0) 0(0) 0(0) 0(0) 3(1) 3(1) 0(0) 1(1) 0(0) 0(0) 1(0) 1(0) 0(0) 3(1) 1(1) 0(0) 4(0) 4(0) 0(0) 1(0) 4(1) 2(0) 4(1) 4(1) 2(0) 4(0) 2(1) 3(1) 0(0) 0(0) 3(1) 4(1) 0(0) 0(0) 1(1) 1(1) 0(0) 0(0) 0(0) 0(0) 0(0) 0(0) 0(0) 1(1) De entre los valores de las actividades enzimáticas que se detectaron en los productos finales, en el compost producido con residuos de olivo cabe destacar la Fosfatasa alcalina, Fosfatasa ácida, Naftol-AS-BI-fosfosfohidrolasa, Esterasa (C4), Lipasa (C14), Esterasa Lipasa (C8), Leucina arilamidasa y β-glucosidasa, 6 que presentaron las actividades específicas más elevadas, valores entre 3 y 5 (> 20 y >40 ηmoles). En el resto de enzimas testados se obtuvieron valores entre 1 y 2 (< 20 ηmoles) o sin ninguna reacción (valor 0). Valores similares se obtienen en el vermicompost de este residuo aunque los valores son ligeramente inferiores (Cayuela et al., 2008; Benítez et al., 2005; Roca-Pérez et al., 2005). En el vermicompost de cítrico y de higuera, los valores de la actividad enzimática son similares, presentando variaciones en Naftol-AS-BI- fosfosfohidrolasa, β-glucosidasa y en N-acétil-β-glucosaminidasa, (valores de <20 ηmoles en los dos primeros, y de > 20 ηmoles en el último). De los compost analizados, el que menos actividad enzimática posee, es el de higuera, destacando los enzimas de Lipasa (C14) y Esterasa Lipasa (C8), con valores de 5 (>40 ηmoles). Conclusiones Los resultados obtenidos en este trabajo muestran las variaciones en los parámetros químicos en el proceso de compostaje y vermicompostaje frente a los residuos de partida. La transformación provocó una mejora de la calidad de los residuos medida en parámetros de fertilidad química y actividad enzimática. En el vermicompost se observa una disminución del contenido de carbono más elevada, además el seguimiento temporal de estas propiedades muestra que los efectos positivos están limitados en el tiempo por las tasas de mineralización de la materia orgánica. En general, los resultados obtenidos indicaron una respuesta directa de la transformación del residuo. El conocimiento adquirido acerca de la dinámica enzimática del proceso de compostaje puede emplearse para manejar de manera más sostenible y aún acelerar el proceso de biotransformación de otros residuos similares. 7 Referencias Aira, M., Monroy, F., Domínguez, J. 2004. Effects of two species of earthworms (Allolobophora spp.) on soil systems: a microfaunal and biochemical analysis. Pedobiologia 47(5-6), 877-881. Aira, M., Monroy, F., Domínguez, J. 2007. Earthworms strongly modify microbial biomass and activity triggering enzymatic activities during vermicomposting independently of the application rates of pig slurry. Science of the Total Environment 385(1-2), 252-261. Aranda, E., Barois, I., Arellano, P., Irisson, S., Salazar, T., Rodriguez, J., Patron, J C. 1999. Vermicomposting in the tropics. P. Lavelle, L. Brussaard and P. Hendrix, Editors, Earthworm Management in Tropical Agroecosystems, CAB Internacional Publishing, New York, pp. 285287. Benítez, E., Sainz, H., Nogales, R. 2005. Hydrolytic enzyme activities of extracted humic substances during the vermicomposting lignocelulosic olives waste. Bioresource Technology 96: 785-790. Brown, G.G., Doube, B.M. 2004. Functional interactions between earrhworms, microorganisms, organic matter and plants. In: Edwards, C.A. (Ed.). Earthworm Ecology.Pp. 213-239, Boca Raton, Florida. Cayuela, M.L., Mondini, C., Sánchez-Monedero, M.A., Roig, A., 2008.Chemical properties and hydrolytic enzyme activities for the characterisation of two-phase olive mil wastes composting.Bioresource Technology 99: 4255-4262. Linn, D. M., Doran, J. W.1984. Effect of water-filled pore space on carbon dioxide and nitrous oxide production in tilled and nontilled soils. Soil Science Society of America Journal 48: 12571272. M.A.P.A. 1986. Métodos oficiales de análisis de suelos, III. Madrid. 166 p. Nelson, D.W., Sommers, L.E. 1982. Total organic carbon and organic matter. In: Page et al. nd (eds.). Methods of Soil Analysis: Chemical and Microbiological Properties. Part 2.2 ed. Agorn. Monogr. 9. ASA and SSSA. Madison, Wisconsin, pp. 581-594. Nogales, R., Domínguez, J., Mato, S., 2008. Vermicompostaje. In: Moreno, J., Moral, R. (Eds.), Compostaje. Ediciones Mundi Prensa, Madrid, pp. 187–208. Nogales, R., Benítez, E. 2006. Absortion of zinc and lead by Dittrichia viscosa grown in a contaminated soil amended with olive-derived wastes. Bulletin of Environmental Contamination and Toxicology; 76: 538-544. Roca-Pérez, L., Arévalo, J., Boluda, R. 2005. The influence of C/N ratio, moisture and pH on the aerobic microbial activity of rice straw and sewage sludge blends. En: Sustainable organic waste management for environmental protection and food safety. 247-249. FAO-CSIC. Murcia. Sellami, F., Hachicha, S., Chtourou, M., Medhioub, K., Ammar, E. 2008. Madurity of composted olive mil wastes using UV spectra and humification parameters. Bioresurce Technology 99:6900-6907. Seoanez, M. 2000. Residuos (Problemática, descripción, aprovechamiento y destrucción. Ediciones Mundi-Prensa. Madrid. 8 Tabatabai, MA, Bremner, JM. 1969. Use of p-nitrophenyl phosphate for assay of soil phosphatase activity. Soil Biology and Biochemistry 1, 301-307. 9