Utililización de columnas sax para limpieza de extractos
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Utililización de columnas sax para limpieza de extractos
UTILILIZACIÓN DE CDLUMNAS CDNTAMlNAIDS S. Resnik Gonzale7 POR SAX PARA LIMPIEZA FUMONISINAS: PH ÓPTIMO. (J,2 , M.S. Neira (1,3), '4) y A. Pacin (1,3). V. DE EX'TRACTOS Anca-ola (1) ele (2)Deptos Qu1mica Orgánica e Industrias.FCEyN. Universitaria 1428.Bs.AS. (3) CIM. Depto. de Tecnología.Universidad Luján,CC221, 6700 Luján, Argentina. (4) CONlCET. Facultad de Ingenierla. UBA. 1 (2), H.H.L. UBA.edad Nacional de INTRODUCCION Las fumonisinas constituyen un grupo de micotoxinas recientemente a~sladas y caracterizadas producidas diferentes cepas de Fusarium moniliforme, proli feratum, F. nygamai, F. anthophilum, F. dlaminiy nap1. forme entre otros. Por una parte el F. mon1.11. forme. el principal contaminante de ma1z en la mayor1a de por F. F. es los paises productores y ha - sido asociado a en fermedades en animales, como la leucoencefalomalacia equina(l), y el edema pulmonar en cerdos (2); ambas reproducidas bajo condiciones experimentales con la administracion de Fumonisina B1 (3-5).Por otra parte, existe una asociación epidemiológica entre la incidencia de cáncer esofágico humano y la contaminación de alimentos por mico toxinas , en Africa (6) .Es necesario tener en cuenta, que el malz es uno de los principales cultivos en Argentina y la contaminaciÓn fúngica predominante en el mismo corresponde a cepas de Fusarium potenciales productoras de fumonisinas. Además, estas toxinas han sido detectadas en muestras de ma1z provenientes de la Provincia de Buenos Aires (7), asi como, se comprobaron casos de leucoencefalomalacia equina (8). Por estas razones es importante disponer de una metodología de fácil acceso para el análisis de las fumonisinas. Uno de los aspectos fundamentales de la metodologia es la limpieza del extracto, previa a la detecciÓn y cuanti ficaciÓn. Esta etapa se puede llevar a cabo por medio del pasaje del extracto. a traves de columnas de intercambio aniónico fuerte (SAX). El objetivo del presente trabajo fue determinar el valor de pH para una recuperación óptima de las fumonisinas, utilizando dos marcas comerciales de columnas SAX. accesibles en nuestro país. 2 METODOLOGIA Las columnas utilizadas anion) Merck Adsorvex Fisons (6 mI. 1000mg) fueron: cato 19345 Accubond 81 SAX (Bond (400mg). Q/A No elut strong y J&W Scientits 1601, denominadas como columnas M y A respectivamente.Las placas para cromatografla planar (TLC) fueron: RP-18 F 254 S 20x20 cm Merck Art. no 15389. Y se midieron en un densi tómetro Desaga CD-60. Cepas productoras: se utilizaron cepas de Fusaríum' moníliforme y F. proliferatum para la producción de fumonisinas. Se desarrollaron. en agar papa durante 7 días a ~50C. conidios mantenidos en tierra estéril provenientes de cultivos monospÓricos. Una vez desarrollado el micelio se cosecharon las esporas con 5 ml de una solución de Tween 80 para obtener un inÓculo de aproximadamente 107 conidios por mI. Con esa suspensión se inocularon 20 muestr~s de SO 9 de harina de maiz. 40% de humedad. esterilizadas durante 30 minutos a 120°C Se incubaron en forma estática. las dos primeras semanas a 25°C y las dos siguientes a 15°C. Obtención del extracto fún~ico y ajuste del pH:La obtención del extracto se realizó a partir de cada una de las muestras de maiz contaminado a las que se les agregó 100 mI de metanol-agua (3:1); se licuaron a alta velocidad durante 5 minutos. se centrifugaron durante 10 minutos a 3000 rpm y se filtraron a través de papel Whatman No.4. Los extractos obtenidos se reunieron previo al fraccionamiento para el ajuste del pH(9). Previo al pasaje del extracto a traves de las columnas SAX se ajustó el pH del mismo a los siguientes valores: 4. S; 6. 7. 8 Y 9. con ácido clorhídrico (3.26 M) o hidróxido de sod i o (1. O O M). Limpieza del extracto y siembra en cromato~rafia planar:Las columnas SAX se adaptaron a tubos Manifold conectados con manguera de vacio a una trampa de agua. Las mismas se activaron con 5 mI de metanol y 5 .ml de metanol:agua (3:1). Se filtraron 10 mI de cada extracto a una velocidad de filtración de 1 mI por minuto. se lavaron con 5 mI de metanol: agua (3:1) Y 3 mI de metanol. Las toxinas se eluyeron con 10 mI de ácido acético al 1% en metanol. El el uido se evaporó a sequedad en rotavapor a 60°C. se resuspendió en metanol. se trasvasó a un vial. se evaporó nuevamente y se mantuvo seco hasta el momento de la siembra,Los residuos secos fueron resuspendidos en 100 ul de metanol y se sembraron 10 ul de cada muestra. La placa se desarrollÓ en cuba saturada y se utilizó como sistema de solvente para la corrida metanol: KCl al 4 % en sol acuosa (60: 40) .Las fumonisinas fueron reveladas una solución de vainillina (150mg en 20 sulfúrico concentrado:etanol (8:2). CuantificaciÓn: Se determinaron los espectros entre 200-700 nm para cada fumonisina en el La longitud de onda óptima para la medición las fumonisinas Bl. B2 Y B3 fue de 280 definida la longitud de onda se procedió a mI de con ácido de absorción densitómetro. 'simultánea de nm .Una vez la lectura de las placas. 3.RESULTADOS Y CONCLUSION La recuperación de las toxinas varió según la columna utilizada en función del pH de la muestra; asi. en el caso de columnas M el pH que permitió la mejor recuperación 82 tanto de FB1. FB2 Y FB3 fue pH=5, en cambio. para las columnas A el pH=7 fue óptimo para FB1 y FB2 mientras que para FB3 la mayor recuperaciÓn correspondiÓ a pH=5. pH FBI-A FB1-M' FB3-A FB3-M FB2-A FB2-M 8 207.5 149.6 154.5 61.1 131.6 33.3 71 6 408.91 258.3 122.9 160.6 122.9 198.2 83.3.1 63.4 5 4 349.6, 28.7 408.21 56.6 423.21333.8 61.6 43.9 396.41 144.S I 58.8\ 20.3 212.S 133.2 264.61 68.3 Un aspecto a destacar es que los extractos provenientes columnas M resultaron más limpidos. La elecciÓn del pH depende de las columnas SAX que utilicen. y es fundamental ajustar el pH del extracto previo al pasaje por las mismas. de se 4 REFERENCIAS BIBLIOGRAFICAS 1 Ross. P.F.; Rice. L.G.; Osweiler. Richard. J.L.; Wilson. T.M. A review toxicoses associated with fumonisin .and production of fumonisins by Mycopathologia.1992;117:109-114. 2 Osweiler. G.D.; Ross. P.F.; Wilson. Witte. S.T.; Carson. T:L.; Rice. 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