Probióticos en acuicultura de camarón ¿verdad ó fantasía?

Transcripción

INVESTIGACIóN
Probiótico
Preparación
ALIBIO
Disolver 100 mg de AC Preminun (A), 100 mg de 2135 Premiun (B) y 100
mg de Bionutre Premiun (C) en 100 mL de agua de estanque limpia. Incubar
durante 12 horas con aireación y agregar 4 mL del cultivo a cada uno de los
3 recipientes destinados para este tratamiento
EPICIN
de Agua de estanque limpia. Incubar durante 8 horas con aireación y
Disolver 2.27 mg de EPICIN-Ponds
y 910 mg de EPICIN-BGM
en 100 mL
agregar 17.6 mL del cultivo a cada uno de los 3 recipientes destinados para
Figura1: Evaluación en matraz de la eficiencia de probióticos usados en granjas de
camarón de Sonora, México.
Figura 2: Contenedores de 1m3 donde se realizó la prueba de eficiencia de probióticos.
Se usó fondo con tierra y agua de estanques, en proporción semejante a las condiciones
de rutina en la granja.
Probióticos en acuicultura de camarón
E
¿verdad ó fantasía?
l cultivo comercial del camarón es una
industria clave en muchos países. Aunque
hay varios problemas que inhiben la
producción de camarón, el control de las enfermedades es probablemente el más importante
de ellos (Skjermo y Vadstein 1999). Tanto las
enfermedades virales como las bacterianas
causan grandes pérdidas en la producción de
camarón y siguen afectando a la industria. En el
caso de las enfermedades bacterianas, aunque
todas ellas son de carácter oportunista, las
vibriosis son el principal problema sobre todo
en las primeras etapas de la historia de vida
del camarón. Hay varias especies de Vibrio que
pueden causar infección en el camarón, por lo
general, Vibrio harveyi y Vibrio alginolyticus
son, a menudo, considerados como la causa
de las enfermedades oportunistas durante el
desarrollo de postlarvas (Manefield et al. 2000),
mientras que Vibrio nigripulchritudo (Lemonnier et al.2006) y Vibrio penaeicida (Costa et al.
1998) han sido detectados como agentes causales del llamado síndrome de verano y síndrome
93, respectivamente.
Debido a que el sistema inmunológico de
los invertebrados carece de elementos celulares como linfocitos, células dendríticas y
macrófagos y moleculares (inmunoglobulinas)
para montar una respuesta inmune específica
como la de los vertebrados, se han explorado
otras estrategias de manera más activa, incluyendo la mejora de la higiene y bioseguridad,
la producción de inmunoestimulantes, por
ejemplo glucanos (Rodríguez et al. 2007) y,
más recientemente, el desarrollo y aplicación
de probióticos (Ninawe y Selvin 2009).
El desarrollo de los probióticos en acuicultura de camarón se ha basado tanto en el uso de
reconocidos organismos probióticos para uso
humano o agrícola, como el Lactobacillus plantarum (Chiu et al. 2007) y Pediococcus acidolactici (Castex et al., 2008) y la selección de nuevas
cepas de bacterias del medio ambiente o tracto
gastrointestinal de los camarones sanos. Estos
han incluido bacterias Gram positivas como
Bacillus S11 (Rengpipat et al., 2003) y Bacillus
subtilis UTM126 (Balcázar y Rojas Luna-2007) y
al parecer cepas no patógenas de Vibrio como
V. alginolyticus (Balcázar et al., 2007) y Vibrio
gazogenes (NCIMB 2250) que han mostrado
tener actividad antagónica con vibrios patógenos para camarón (Thompson, et al., 2010),
mientras que otras bacterias probióticas han
dilucidado nuevos enfoques. Sin embargo, la
eficacia y el modo de acción de los probióticos
en el camarón sigue siendo poco entendido
(Ninawe y Selvin 2009).
Si bien este tipo de insumos está siendo
Agregar 5 µL de AC-3000-1 5 µL de AC-3000-2
recipientes destinados para este tratamiento
KEETON Industries
Disolver 100 mg en 100 mL de agua de mar limpia. Incubar 24 horas (25°C)
con aireación. Agregar 800 µL del cultivo a cada uno de los 3 recipientes
destinados para este tratamiento.
Biowish Technologies
Disolver 40 g de BIOWISH-AQUA
en 400 mL de agua de mar limpia.
Agregar directamente (sin incubar) 100 mL del producto en cada uno de los
INVE-aquaculture
Disolver 64 mg de Sanolife-PRO-W
en 400 mL de agua de mar limpia.
Agregar directamente (sin incubar) 100 mL del producto en cada uno de los
a cada uno de los 3
Se agregaron 4 mL en cada uno de los 3 recipientes destinados para este
Melaza
tratamiento
CONTROL
NO APLICA
Tabla 1: Preparación de los probióticos para la prueba a nivel granja. Se calcularon las proporciones de acuerdo a las instrucciones del fabricante.
Antecedentes
La industria camaronicola ha tenido
que recurrir al uso de aditivos en los cultivos
debido a la necesidad de mantener la salud
y el bienestar de los organismos en los estanques. Aunque la definición de probiótico se
refiere más a bacterias vivas que mejoren las
condiciones intestinales de los organismos
para mantener una absorción adecuada de
nutrientes, la idea generalizada en la actualidad en acuicultura es que los “probioticos”
son bacterias que mejoran la calidad del agua
y los suelos en los estanques.
PROBIO-AQUABIO
ampliamente usado en la acuacultura mundial,
en México, los “probioticos” han tomado importancia debido a la promesa de los proveedores,
de que estos insumos mejorarán las condiciones
de vida de los camarones. Sin embargo, hasta
el momento no existen reportes que soporten
la idea de su buen funcionamiento detectando
opiniones encontradas sobre la eficiencia de
estos productos.
acuicultores, por conocer con base en evidencias científicas, si los productos usados como
probióticos o biorremediadores realmente
tienen el efecto que se espera. Para esto, se
analizó la eficiencia de 6 probióticos actualmente utilizados en la camaronicultura Sonorense.
En Sonora, uno de los principales productores de Camarón por acuicultura en México,
existe una demanda específica por parte de los
El análisis se realizó en el Laboratorio de
Referencia Análisis y Diagnóstico en Sanidad
Acuícola (LARADSA) del CIBNOR, unidad
Sonora, campus Hermosillo. Este laboratorio
construido a principios del 2011 es un laboratorio con nivel de bioseguridad tipo II con capacidad instalada para el análisis experimental
de enfermedades de organismos acuáticos y
evaluación de insumos usados en la industria
acuícola.
Día 1
Día 2
0h
2h
8h
12 h
14 h
24 h
Aplicación
Día 3
0h
2h
6h
8h
Preparados en el
momento de la
aplicación
12 h
14 h
24 h
Figura 3: Esquema de
sincronización
en
la
preparación de los probióticos
usados en este trabajo.
Diseño experimental
La prueba se llevo a cabo en dos etapas,
en la primera se evaluaron los probióticos a
nivel de laboratorio, evaluando su eficiencia
para realizar el mejoramiento ambiental, que
se recomienda por el fabricante, utilizando
sistemas de monitoreo en matraces (figura 1).
Se eligieron 6 marcas diferentes de probióticos
usados en granjas camaronicolas de la costa de
Horas de incubación
2
0.78 ± 0.004
0.80 ± .013
0.99 ± .0116
0.82 ± 0.013
1.45 ± .011
0.78 ± .008
0.77 ± .007
4
0.62 ± 0.003
0.67 ± 0.012
1.01 ± 0.010
0.67 ± 0.006
1.20 ± .009
0.78 ± .005
0.78 ± .006
6
0.67 ± 0.016
0.77 ± 0.013
1.06 ± .011
1.14 ± .008
1.33 ± 0.013
0.88 ± 0.004
0.66 ± 0.006
24
0.67 ± 0.021
0.77 ± 0.005
1.05 ± 0.011
1.14 ± 0.008
1.33 ± 0.018
0.88 ± 0.005
0.66 ± 0.005
Tabla 2: Concentración de amonio en mezclas de probiótico y agua de mar adicionada con NH4Cl. Los valores (mg/mL) corresponden al promedio de 3
repeticiones ± la desviación estándar.
0.4
0.3
0.2
0.1
Hermosillo y se prepararon de acuerdo con las
instrucciones del fabricante (tabla 1).
ALIBIO
EPICIN
PROBIO AQUABIO
KEETON
0
INVE-Aquaculture
Melaza
Figura 4: Esquema de distribución de contenedores para las pruebas de
probióticos en condiciones de granja.
camarones de talla promedio 10 g a densidad
de 20 organismos/m2. Los recipientes se colocaron en un estanque de cemento que se llenó
con agua de mar para amortiguar la temperatura. La figura 4 representa el esquema de
distribución de los productos
En la primera fase se analizó la eficiencia
4.0
3.5
Amonio (mg/mL)
Materia Orgánica (mg/mL)
3.0
Inicial
Final
0.8
0.6
Inicial
Final
2.5
2.0
1.5
0.4
1.0
0.2
0.5
0
0 ALIBIO AQUABIO BIOWISH EPICINP KEETON PROW MELAZA CONTROL
ALIBIO AQUABIO BIOWISH EPICINP KEETON PROW MELAZA CONTROL
1.0
0.16
0.10
0.08
0.06
0.9
0.8
Fosfatos (mg/mL)
NItritos (mg/mL)
Inicial
Final
0.12
Inicial
Final
0.7
0.6
0.5
0.4
0.3
0.04
0.2
0.02
0
0.2
0
120
0.1
0
Parámetro
Frecuencia
Parámetros
ambientales
Calidad de Agua
Diario
(P=0.097)
60
40
20
AQUABIO ALIBIO BIOWISH EPICIN KEETON PRO-W MELAZA CONTROL
Figura 6: Parámetros plasmáticos medidos en camarones contenidos en
camarones de recipientes tratados con probióticos durante 15 días. Las barras
representan el promedio de tres repeticiones y la desviación estándar. No se
observan diferencia s significativas respecto al control.
de los “probioticos” para eliminar el amonio
contenido en agua marina preparada. Después
de fomentar el crecimiento del “probiotico”,
de acuerdo a las instrucciones del fabricante
y poner el cultivo en contacto con el agua
conteniendo una concentración conocida de
amonio, la mezcla se mantuvo en incubación
y se analizó la concentración de amonio a las
0, 2, 4, 6 y 24 horas después de la incubación.
Los resultados obtenidos no mostraron disminución en el contenido de amonio causada por
Diario
Bacteriológico
Cada tercer día antes de
poner el probiótico
Metabolitos
Quincenal
Inmunológico
Quincenal
80
0
0.18
0.14
0.4
100
1.4
1.0
0.6
En la segunda fase se analizó el efecto del
tratamiento con probióticos sobre la calidad
del agua, concentración de bacterias en agua,
metabolitos plasmáticos y parámetros de
sistema inmune en hemolinfa de camarones.
La frecuencia del muestreo fue de acuerdo a la
siguiente tabla:
Resultados y discución
Figura 5: Parámetros de calidad de agua medidos en recipientes tratados
con probióticos durante 15 días. Las barras representan el promedio de tres
repeticiones y la desviación estándar. No se observan diferencia s significativas
respecto al control.
1.2
(P=0.082)
CONTROL
Glucosa (mg/mL)
BIOWISH
ninguno de los probióticos analizados (tabla
2).
La concentración de amonio se midió
usando una técnica modificada y adaptada
para microplaca según Hernández-López y
Vargas-Albores (2003). De la misma manera se
analizó la capacidad de cada probiótico para
inhibir el crecimiento de Vibrio alginolyicus en
24 horas de incubación, utilizando una técnica
de inhibición en caldo adaptada a microplaca
en nuestro laboratorio. De la misma manera
que con el amonio, ningún tratamiento mostró
capacidad para inhibir el crecimiento de V. alginolyticus.
El análisis de los parámetros anteriores
indicó que ninguno de los probióticos usados
mejora la calidad de agua (figura 5), los paráCuenta de hemocitos (millones/mL)
Cada uno de estos proboioticos se preparó,
en la proporción adecuada de acuerdo a las
instrucciones del fabricante y su uso se sincronizó para que el tiempo inicial de las pruebas
fuera el mismo (figura 3) para ser usados en
recipientes de 1 m3 conteniendo 800 L de agua
de mar y fondo de tierra (figura 2) conteniendo
0.8
Proteinas Totales (mg/mL)
La segunda etapa consistió en realizar la
prueba de eficiencia de los productos elegidos,
en contenedores de 1 m3 y en las condiciones
más cercanas posibles a las existentes en los
estanques de cultivo. Para ello, esta fase se
realizó en una granja acuícolas de la costa de
Bahía Kino en Sonora, México, usando el material y los insumos que se utilizan de manera
rutinaria en las granjas de camarón.
(P=0.117)
2.E+07
2.E+07
1.E+07
5.E+06
0.E+00
0.4
(P=0.605)
Fenoloxidasa (Actividad/min)
CONTROL
EPIZYM
INVE- AQUAC
ALIBIO
BIOWISH
AQUABIO
KEETON
0
0.68 ± 0.016
0.84 ± 0.010
1.02 ± .007
0.81 ± .009
1.53 ± .026
0.79 ± .009
0.82 ± .038
Colesterol (mg/mL)
Muestra
0.5
0.3
0.2
0.1
0.0
Figura 7: Parámetros de sistema inmune medidos en camarones contenidos en
recipientes tratados con probióticos durante 15 días. Las barras representan
el promedio de tres repeticiones y la desviación estándar. No se observan
diferencia s significativas respecto al control.
(Penaeus monodon) pathogen Vibrio harveyi by intercellular signal antagonist.
Appl Environ Microbiol 66, 2079–2084.
3.
Lemonnier, H., Herbland, A., Salery, L. and Soulard, B. (2006)
‘‘Summer syndrome’’ in Litopenaeus stylirostris grow out ponds in New
Caledonia: zootechnical and environmental factors. Aquaculture 261, 1039–
1047.
4.
Costa, R., Mermoud, I., Koblavi, S., Morlet, B., Haffner, P., Berthe,
F., Legroumellec, M. and Grimont, P. (1998) Isolation and characterization of
bacteria associated with Penaeus stylirostris disease (Syndrome 93) in New
Caledonia. Aquaculture 164, 297–309
5.
Rodríguez, J., Espinosa, Y., Echeverria, F., Cárdenas, G., Román,
R. and Stern, S. (2007) Exposure to probiotics and b-1,3 ⁄ 1,6-glucans in
larviculture modifies the immune response of Penaeus vannamei juveniles and
both the survival to White Spot Syndrome Virus challenge and pond culture.
Aquaculture, 273, 405–415
6.
Ninawe, A.S. and Selvin, J. (2009) Probiotics in shrimp aquaculture:
avenues and challenges. Crit Rev Microbiol 35, 43–66.
7.
Chiu, C.-H., Guu, Y.-K., Liu, C.-H., Pan, T.-M. and Cheng, W.
(2007) Immune responses and gene expression in white shrimp, Litopenaeus
vannamei, induced by Lactobacillus plantarum. Fish Shellfish Immunol 23,
364–377.
8.
Castex, M., Chim, L., Pham, D., Lemaire, P., Wabete, N., Nicolas,
J.-L., Schmidely, P. and Mariojouls, C. (2008) Probiotic P. acidilactici
application in shrimp Litopenaeus stylirostris culture subject to vibriosis in
New Caledonia. Aquaculture 275, 182–193
9.
Rengpipat, S., Tunyamum, A., Fast, A.W., Piyatiratitivoraku, S.
and Menasveta, P. (2003) Enhanced growth and resistance to Vibrio challenge
in pond-reared black tiger shrimp Penaeus monodon fed a Bacillus probiotic.
Dis Aquat Organ 55, 169–173.
10.
Balca´zar, J.L., Rojas-Luna, T. and Cunningham, D.P. (2007) Effect
of the addition of four potential probiotic strains on the survival of Pacific
white shrimp (Litopenaeus vannamei) following immersion challenge with
Vibrio parahaemolyticus. J Invertebr Pathol 96, 147–150.
11.
Balcázar, J.L., Rojas-Luna, T. and Cunningham, D.P. (2007) Effect
of the addition of four potential probiotic strains on the survival of Pacific
white shrimp (Litopenaeus vannamei) following immersion challenge with
Vibrio parahaemolyticus. J Invertebr Pathol 96, 147–150.
12.
Ninawe, A.S. and Selvin, J. (2009) Probiotics in shrimp aquaculture:
avenues and challenges. Crit Rev Microbiol 35, 43–66.
13.
Thompson, J., Gregory, S., Plummer, S., Shields, R.J. and Rowley,
A.F. (2010). An in vitro and in vivo assessment of the potential of Vibrio spp.
as probiotics for the Pacific White shrimp, Litopenaeus vannamei. Journal of
Applied Microbiology 109, 1177–1187.
14.
Hernández-López, Jorge and Vargas-Albores, Francisco A
microplate technique to quantify nutrients (NO2-, NO3-, NH4+ and PO43-) in
seawater. Aquaculture Research 34:1201-1204. (2003)
metros metabólicos (figura 6), inmunológicos
(figura 7) ni disminuye la concentración de
baterías en los estanques (figura 8).
Conclusiones
Con base en los resultados de los análisis,
tanto a nivel matraz como en condiciones de
campo, no se observa una diferencia estadística significativa en los parámetro fisiológicos
(metabolismo y sistema inmune) ni ambientales
(calidad de agua y bacterias). De acuerdo con
lo observado, ningún probiótico usado actualmente en el cultivo de camarón en Sonora,
México, mostro tener la eficiencia recomendada por los fabricantes.
Hernández López Jorge1, Coronado Molina Daniel1, Mendoza Cano J.
Fernando1, Galván Alvarez Diego1, Encinas García Trinidad1, José Guadalupe
Cruz Ruiz2, Marco Antonio Quijada Vázquez2 Juan Carlos Gastelum, Alberto
Gastelum y Cesar Eduardo Patiño3.
1.
Laboratorio de Referencia, Análisis y Diagnóstico en Sanidad
Acuícola. Centro de Investigaciones Biológicas del Noroeste S. C. Unidad
Sonora, Campus Hermosillo.
2.
Laboratorio de control calidad. Acuícola Selecta S.A. de C.V.
3.
Laboratorio de control calidad. Acuícola la Borbolla S.A. de C.V.
BIBLIOGRAFIA CITADA
1.
Skjermo, J. and Vadstein, O. (1999) Techniques for microbial
control in the intensive rearing of marine larvae. Aquaculture 177, 333–343
2.
Manefield, M., Harris, L., Rice, S.A., De Nys, R. and Kjelleberg,
S. (2000) Inhibition of luminescence and virulence in the black tiger prawn
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Probióticos en acuicultura de camarón ¿verdad ó fantasía?

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